Data/hora: 16/06/2024 08:42:38

Biblioteca(s): 	Epagri-Sede.	
Data corrente: 	03/10/2018	
Data da última atualização: 	03/10/2018	
Autoria: 	MENEZES-NETTO, A. C.; MENDES, S. D. C.; PERAZZOLI, V.; COSER, E.	
Título: 	METODOLOGIA PARA OBTENÇÃO DE NINFAS DE PRIMEIRO ÍNSTAR DE PÉROLA-DA-TERRA, Eurhizococcus brasiliensis (HEMIPTERA: MARGARODIDAE).	
Ano de publicação: 	2018	
Fonte/Imprenta: 	In: SEMINÁRIO NACIONAL SOBRE FRUTICULTURA DE CLIMA TEMPERADO, 13., 2018, São Joaquim, SC. Anais do 13º Seminário Nacional sobre Fruticultura de Clima Temperado. Florianópolis: Epagri, 2018. p. 120	
Idioma: 	Português	
Conteúdo: 	A pérola-da-terra ou margarodes é uma cochonilha que se desenvolve em raízes de aproximadamente 79 espécies de plantas hospedeiras, cultivadas ou não. Na videira, a pérola-da-terra faz parte de um complexo de interações bióticas que desencadeiam no enfraquecimento e morte das plantas. A mortalidade das videiras é resultante da ação conjunta da pérola-da-terra (sucção de seiva), de nematoides e fungos de raízes, e de fungos de parte aérea. Outros estressores bióticos (ex.: doenças foliares) e abióticos (ex.: excesso de cobre no solo) também devem contribuir para a intensificação da mortalidade das plantas. Para se entender as interações entre esses agentes e qual a contribuição individual deles no processo de declínio de videiras, são necessários estudos em condições controladas, de modo a se isolar variáveis de estudo. A ausência de metodologia de criação da pérola-da-terra em laboratório limita consideravelmente a realização de tais estudos, uma vez que a coleta de cistos brancos (com ovos) a campo é bastante laboriosa e pouco eficiente. Hickel (2005) obteve ninfas de 1º ínstar em laboratório a partir de cistos amarelos coletados a campo. Após algumas tentativas não exitosas em reproduzir o resultado de Hickel (2005), apresentamos aqui uma metodologia alternativa para a obtenção de ninfas de 1º estádio ninfal em laboratório. Do mesmo modo que ele, coletamos cistos amarelos a campo (em vinhedo da cultivar Isabel, mudas pé franco), os lavamos em água corrente e os esterilizamos em solução de hipoclorito de sódio a 0,5%, por aprox. 20 segundos. Contudo, ao invés de mantê-los em placas de Petri forradas com papel filtro umedecido, nós os acondicionamos em recipientes plásticos de 15 cm de diâmetro x 10 cm de altura, em areia esterilizada em autoclave a 121°C, 1 atm, por 1 hora. Colocamos os cistos em camada de areia de aprox. 8 cm, a uma profundidade de 2 cm da superfície. Mantivemos os recipientes com os cistos em câmara B.O.D., a 25±2°C, sem fotofase, repondo a umidade do substrato (areia) com água destilada em intervalos de um ou dois dias (baseado em Hickel, 2005). Instalamos o experimento em 21 de junho de 2017 e constatamos a eclosão das primeiras ninfas a partir da segunda quinzena de outubro de 2017, ou seja, aproximadamente quatro meses após o início do experimento. De oitenta e quatro cistos amarelos iniciais, obtivemos 78 cistos brancos viáveis (93%) e seis inviáveis (7%). Dos cistos viáveis eclodiu grande quantidade de ninfas, o que configura como um resultado bastante satisfatório. A modificação do substrato (papel filtro para areia) eliminou a necessidade de rompimento dos cistos e coleta dos ovos após a mudança de cor amarela para branca. A incubação de ovos e obtenção de ninfas em laboratório reduz significativamente a mão-de-obra para infestar plantas em condições experimentais controladas, e diminui a mortalidade do número de indivíduos por não precisar manipulá-los e transportá-los do campo aos vasos em casa de vegetação.	
Palavras-Chave: 	biologia; Criação; laboratório.	
Categoria do assunto: 	O Insetos e Entomologia	
URL: 	http://intranetdoc.epagri.sc.gov.br/producao_tecnico_cientifica/DOC_41375.pdf	
Registro original: 	Epagri-Sede (Epagri-Sede)	
Exemplares: 	Epagri-Sede - (102782-1) - UPC - PL - DD -  -  -  - DIS